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链霉亲和素的突变体-琼脂糖凝胶
1 、产品介绍
Strep-Tactin 2 NUPharose FF是链霉亲和素的突变体(Strep-Tactin2配基)和琼脂糖凝胶偶联形成的和层析分离介质,用于分离、纯化StrepII或Twin Strep标签蛋白。Strep II标签为8个氨基酸的小标签(WSHPQFEK),一般不影响融合后蛋白质的结构和功能,常用于融合表达蛋白质的检测和纯化。Twin Strep标签为两个StrepII串联的标签,相比Strep II标签,Twin Strep标签与Strep-Tactin 2配基的亲和力更高。
本产品的Strep-Tactin 2配基与上一代Strep-Tactin 配基相比,对Strep II标签的亲和力进一步提高,与生物-素的亲和力大幅削弱。因而本产品能够更牢固的结合Strep II融合蛋白,在融合蛋白表达丰度较低时,相对捕获量更高,载量和得率更高。在洗脱方面,可以使用生物-素进行洗脱,比采用昂贵的脱硫生物-素洗脱更经济,且使用后可采用10~50 mM NaOH进行再生。本产品对Strep II标签具有高度特异性,一般只需一步纯化就能获得高纯度的蛋白质样品。
2 、产品特点与技术指标
产品名称 | 链霉亲和素的突变体-琼脂糖凝胶 |
基质 | 4%交联琼脂糖 |
配基 | Strep-Tactin 2 配基, ≥5 mg/ml |
粒径范围 a | 45~ 165 μm |
平均粒径 | ~90 μm |
动态结合载量 b | 8~ 10 mg/ml Strep II 标签蛋白 |
推荐工作流速 | 60~ 150 cm/h |
最大流速与压力 | >900 cm/h ,0.3 MPa |
使用 pH | 6~ 10(推荐的工作 pH),10~50 mM NaOH(CIP 清洗) |
化学稳定性 | 在以下溶液中稳定:常用的水相缓冲液、8 mol/L 尿素等。 |
储存与运输 | 20%乙醇,2~8 ℃(储存),2~30 ℃(运输) |
注:a90%体积以上的微球在此粒径范围;bDBC10%测试条件为:10%流穿,大肠杆菌表达的带Strap II 标签的增强型绿色荧光蛋白,6 min 停留时间。
3 、Strep II 、Twin Strep 标签亲和层析
Strep-Tactin 2 NUPharose FF对Strep II、Twin Strep标签蛋白的特异性结合以及纯化过程如图1和图2所示。
4 、使用方法参考
4.1 色谱柱装填
以下阐述与层析系统连接时,填料的色谱柱装填方法。
(1)所有需要用到的材料的温度要与色谱操作的温度一样,液体最好做脱气处理。
(2)填料用量计算:通过沉降定量填料体积,需要的沉降填料体积=柱体积×压缩比(也称压缩因子)。沉降体积是指填料在20%乙醇保存液中自然沉降完-全读取的稳定体积。Strep-Tactin 2 NUPharose FF的压缩比为1.15 。为使达到装柱比,可通过柱头下压的方法,也可以通过高流速压柱。
(3)填料清洗:将填料悬液充分摇匀后量取相应体积,抽滤除去液体,并用约3倍填料体积的纯化水洗涤,重复3次,以除去保存液。
(4)装柱填料悬液准备:将填料转移到适当的容器中,加入适量的装柱液,制成50~75 v%的装柱填料悬液,使用前搅匀。
(5)装填前准备:在清洗干净的层析柱下端加入装柱液,以除去下垫片及层析柱下端的空气,在柱内保留少量的蒸馏水,拧紧下堵头,调整柱子使其垂直于地面。
(6)装填:将搅匀后的填料悬液一次性缓慢倒入层析柱内(必要时使用装柱器),为避免引入气泡,应使之沿层析柱内壁自然流下。将所有填料加入后,用装柱液将装 柱器加满,拧紧装柱器上盖,将柱子与层析系统连接。
(7)压柱:使柱内填料自然沉降(或50~150 cm/h的低流速下沉降),待填料沉降完-全后(填料与液体的界面清晰),去除装柱器,装上上柱头,并将柱头下降至界面处;通过高流速(推荐流速见下表,注意柱压不超过0.3 MPa),继续压柱至界面清晰 稳定,标记界面稳定时的柱高。停泵,打开柱头上的阀门/堵头,关闭柱底的阀门/堵 头,下压柱头至标记位置下方与压缩比对应的位置,旋紧柱头,装柱完成。装柱完成后,需用高流速平衡柱内的填料。
装柱条件 | Strap-Tactin 2 NUPharose FF |
压缩比 | 1.15 |
装柱流速 | 600 cm/h |
4.2 柱效测定和评价
完成装柱后、使用前可通过柱效测定和评价可以确认层析柱装填质量。柱效通常用理论塔板高度(HETP)和非对称因子(As)来评价。
4.3 平衡与上样(Equilibration & Loading)
Strep-Tactin 2 NUPharose FF填料的工作pH范围为6~10,推荐下述缓冲液A为平衡与上样缓冲液。样品需作澄清处理,并用缓冲液A稀释或者换液成缓冲液A。
缓冲液A:100mM Tris-HCl,150mM NaCl,1mM EDTA,pH8.0。平衡5个柱体积,建议流速为~150 cm/h上样流速为50~150cm/h,较小的流速有利于载量的提高,可根据实际结合情况选择流速,能获得较好的效果。
4.4 再平衡
上样后用缓冲液A再平衡5~10 CV,或平衡至基线,洗去杂质,推荐流速为~150cm/h。
4.5 洗脱(Elution)
推荐含10~50 mM的D-生物-素作为洗脱缓冲液,如下述的缓冲液B。
缓冲液B:50mM d-Biotin,100 mM Tris-HCl,150 mM NaCl,1 mM EDTA,pH8.0。 用洗脱缓冲液洗6-10 CV,建议流速为~150 cm/h。
4.6 再生(Regeneration)
在一次或多次使用后,需要对填料进行再生:水,3~5 CV,~150cm/h;10~50 mM NaOH,3 CV,3 min接触时间;水,3~5 CV,~150 cm/h;再用缓冲液A平衡5~ 10 CV,150 cm/h。
4.7 填料保存
填料的初始保存液为20%乙醇,使用过后可继续用20%乙醇保存。保存温度在2~8 ℃为宜,不可冻存